ارزیابی اثر علف‌کش‌های انتخابی سویا بر سرعت رشد میسلیوم قارچ Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid عامل پوسیدگی ذغالی در شرایط آزمایشگاهی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

چکیده

چکیده
علف‌کش‌ها به­طور وسیعی در مزارع مختلف مورد استفاده قرار می­گیرند اما مکانیسم فعل و انفعلات ممکن بین علف‌کش‌ها و بیمارگرهای گیاهی به‌خوبی شناخته نشده است. یکی از مهم‌ترین بیماری‌های سویا، پوسیدگی ذغالی است که عامل آن قارچ  Macrophomina phaseolina ، می‌باشد. علف‌کش‌های ایمازتاپیر، تریفلورالین و متری‌بیوزین به ‌صورت ­کاربرد خاکی در کشت سویا کاربرد دارند. به­منظور بررسی اثر غلظت‌های مختلف علف‌کش‌های مذکور بر سرعت رشد قارچ، آزمایشی به­صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در شش تکرار در شرایط آزمایشگاهی انجام گردید. برای هر یک از علف‌کش‌ها، غلظت‌های صفر تا 7000 میلی‌گرم در لیتر در محیط کشت سیب‌زمینی ‌دکستروز آگار (س. د. آ.) در نظر گرفته شد. دیسک قارچ در مرکز پتری‌دیش‌های نه سانتی‌متری قرار داده شد و میزان رشد طولی میسلیوم به‌طور روزانه اندازه‌گیری گردید. میزان سرعت رشد با استفاده از معادله دز‌- ‌پاسخ لجستیک چهار پارامتره برازش داده شد. نتایج حاصل از تأثیر استفاده از غلظت‌های علف‌کش در محیط کشت نشان داد که بین جدایه‌ها تفاوت معنی‌داری وجود دارد. علف‌کش‌های تریفلورالین با غلظت‌های 4320 و 5760 میلی‌گرم در لیتر، ایمازتاپیر در غلظت‌های 2300 و 7000 میلی‌گرم در لیتر و هم‌چنین متری‌بیوزین در غلظت‌های 5000 و 7000 میلی‌گرم در لیتر تقریباً به طور کامل موجب توقف رشد قارچ شدند. علف‌کش‌های ایمازتاپیر، متری‌بیوزین و تریفلورالین به­ترتیب بیشترین تأثیر را روی کاهش سرعت رشد جدایه‌های M. phaseolina  در محیط کشت س. د. آ. داشتند.
 

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Effect of Soybean Selective Herbicides on Mycelium Growth Rate of Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid, Soybean Charcoal Rot in Vitro

چکیده [English]

Abstract
Herbicides are widely used in various fields, but the mechanism of all possible interactions between herbicides and plant have hot been well understood yet. Charcoal rot, caused by Macrophomina phaseolina, is one of the most important diseases of soybean. Imazethapyr, trifluralin and metribuzin herbicides are used as soil -applied herbicides in soybean. Experiment arranged as factorial in Completely Randomised Design (CRD) with 6 replications in a laboratory condition in order to study of zero to 7000 mg.l-1 concentrations of imazethapyr, trifluralin and metribuzin herbicides in Potato Dextrose Agar on medium culture M. phaseolina mycelium growth rate. Fungus disk was placed on the center of 9 cm petri dishes and mycelium growth was measured daily. Growth rate of mycelium was fitted using four parameters logistics dose - response equation. Results showed that different doses of herbicides have significant effect on fungal growth rate. Trifluralin at 4320 and 5760 ppm, imazethapyr at 2300 and 7000 ppm and metribuzin at 5000 and 7000 ppm concentrations completely ceased the growth of fungus. Imazethapyr showed the most inhibitory effects on M. phaseolina isolates in the PDA medium culture followed by metribuzin and trifluralin.
 

کلیدواژه‌ها [English]

  • Keyword: Imazthapyr
  • Metribuzin
  • Soil born disease
  • Trifluralin
شیخی‌گرجان ع، نجفی ح، عباسی س، صابرف و رشید م، 1391 . راهنمای آفت کش‌های ایران 1391. انتشارات کتاب پایتخت. 376 ص.
مدیری ا و منتظری م، 1392. تأثیر علف‌کش‌های انتخابی پنبه و سویا روی رشد میسلیومی قارچ Rhizoctonia solani عامل بیماری مرگ گیاهچه. فصلنامه گیاهپزشکی، 5: 108-99.
Babu BK, Saxena AK, Srivastava AK, and Arora DK, 2007. Identification and detection of Macrophomina phaseolina by using specificspecies oligonucleotide primers and prob. Mycologia 99: 797-803.
Beam HW, Curl EA, and Rodriguwz-Kabana R, 1977. Effects of the herbicides fluometuron and prometryn on Rhizoctonia solani in soil cultures. Canadian Journal of Microbiology 23: 617-623.
Black BD, Russin JS, Griffin JL, and Snow JP, 1996. Herbicide effects on Rhizoctonia solani in vitro and Rhizoctonia foliar blight of soybean (Glycine max). Weed Science 44: 711-716.
Bradley CA, Hartman GL, Wax LM, and Pedersen WL, 2002. Influence of herbicides on Rhizoctonia root and hypocotyls rot of soybean. Crop Protection 21: 679-687.
Casal WL, and Hart LP, 1986. Influence of four herbicides on carpogenic germination and apothecium development of Sclerotinia sclerotiorum. Phytopathology 76: 980-984.
Chan MMY, Trimer RE, and Fong B, 1991. Effect of antimicrotubule drug oryzalin on growth and differentiation of the parasitic protozoan Leishmania mexicana. Differentiation 46:15-21.
Dissanayake N, Hoy JW, and Griffin JL, 1998. Herbicide effects on sugarcane growth, Pythium root rot, and Pythium arrhenomanes. Phytopathology 88: 530-535.
Duke SO, Cerdeira AL, and Matallo MB, 2007. Herbicide effects on plant disease. Pest Management Science 18:36-40.
EL-Shanshoury AR, Abu EL-Sououd SM, Awadalla OA, and El-Bandy NB, 1996. Effects Streptomyces corchorusii, Streptomyces mutabilis, pendimethalin, and metribuzin on the control of bacterial and Fusarium wilt of tomato. Canadian Journal of Botany 74:1016-1022.
Harikrishnan R, and Yang XB, 2001. Influence of herbicides on growth and sclerotia production in Rhizoctonia solani. Weed Science 49: 241-247.
Houshyiar FM, and Darvish TM, 2011. Effects of two systemic insecticides on damping off pathogens of Cotton. Journal of Agricultural Science and Technology 13: 27-33.
Guadarrama- Mendoza PC, Valencia del Toro G, Ramírez- Carrillo R, Robles- Martínez F, Yáñez- Fernández J, Garín- Aguilar M E, Hernández CG, and Bravo-Villa G. 2014. Morphology and mycelial growth rate of Pleurotus spp. Strains from the Mexican mixtec region. Brazilian Journal of Microbiology 45(3): 861-872.
Hyde GJ, and Hardham AR, 1993. Microtubules regulate the generation of polarity in zoospores of Phytophthora cinnamoni. European Journal of Cell Biology 62: 75-85.
Jana T, Sharma T, Prasad RD, and Arora DK, 2003. Molecular characterization of Macrophomina phaseolina and Fusarium species by a single primer RAPD technique. Microbiological Research 158: 249-257.
Katan I, and Eshel Y, 1974. Effect of the herbicide diphenamid on damping- off disease of pepper and tomato. Phytopathology 64: 1186-1192.
Kortekamp A, 2011. Unexpected side effect of herbicides modulation of plant pathogen interaction. Herbicides and Environment. Published by InTech. 746p.
Micheal DO, and Fawole OB, 2009. In vitro effects of some pesticides on pathogenic fungi associated with legumes. Australian Journal of Crop Science 3(3): 173-177.
Montazeri M, and Hamdollah- zadeh H, 2005. The effect of trifloralin on Rhizoctonia solani (isolate AG-4), causal agent of soybean damping off. Caspian Journal Science 3(2): 169-172.
Morejohn LC, Bureau TE, Mole-Bajer J, Bajer AS, and Fosket DE, 1987. Oryzalin, a dinitroanaline herbicide binds to plant tubulin and inhibits microtubule polymerization in vitro. Planta 172: 252-264.
Pakdaman BS, Komijani S, Afshari HA, and Goltapeh EM, 2006. In vitro studies on the integrated control of rapeseed white stem rot disease through the application of Herbicides and Trichoderma species. Journal of Agricultural Technology 2(2): 165-175.
Pankey JH, Griffin JL, Colyer PD, Schneider RW, and Miller DK, 2005. Preemergence herbicide and glyphosate effects on seedling diseases in glyphosate- resistant cotton. Weed Technology 19: 312-318.
Radkey VL, and Grau CR, 1986. Effects of herbicides on carpogenic germination of Sclerotinia sclerotiorum. Plant Disease Journal 70: 19-23.
Reddy KN, Rimando AM, Duke SO, Nandula VK, 2008. Aminomethylphosphonic acid accumulation in plant species treated with glyphosate. Journal of Agricultural and Food Chemisty, 56 :2125-2130.
Russin JS, Carter CH, and Griffin JL, 1995. Effects of grain sorghum (Sorghum bicolor) herbicides on charcoal rot fungus. Weed Technology 9: 343-351.
Sanogo S, Yang X.B, and Scherm H, 2000. Effects of herbicides on Fusarium solani f. sp. glycines and development of sudden death syndrome in glyphosate tolerant soybean. Phytopathology, 90: 57-66.
Santoro PH, Cavaguchi SA, Alexandre TM, Zorzetti J, and Neves MOJ, 2014. In vitro sensitivity of antagonistic Trichoderma atroviride to herbicides. Biology and Technology of Journal 57: 238-243.
Sanyal D, and Shrestha A, 2008. Direct effect of herbicides on plant pathogens and disease development in various cropping systems. Weed Science 56: 155-160.
Seefeldt SS, Jensen JE, and Fuerst EP, 1995. Log-Logistic analysis of herbicide dose-response relationships. Weed Technology 9: 218-227.
Smith SN, and Lyon AJE, 1976. The uptake of Paraquat by soil fungi. New Phytologist. 76: 479-484.
Smith GS, and Wyllie TD, 1999. Charcoal Rot. Pp. 29-31. In GL Hartman, JB Sinclair, and JC Rupe (eds.) Compendium of Soybean Disease. 4th ed. American Phytopathological Society, St. Paul, MN.
Strachan SD, and Hess FD, 1983. The biochemical mechanism of action of the dinitroanaline herbicide oryzalin. Pesticide Biochemistry and Physiology 20:141-151.
Teasdale JR, Harvey RG, and Hagedorn DJ, 1979. Mechanism for the suppression of pea (Pisum sativum) root rot by dinitroanaline herbicides. Weed Science 27: 195-201.
Trebst A, 2008. The mode of action of triazine herbicides, Pp: 101-110. In: The Triazine Herbicides: 50 years  Revolutionizing Agriculture, HM LeBaron, JE McFarland, and O Burnside (eds.).
Wacker, I., Quader, H., and Schnepf, E. 1987. Influence of herbicide oryzalin on cytoskeleton and growth of Funaria hygrometrica Pronemata. Protoplasma 142: 55-67.